可溶性有机氮的测定方法?
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发布时间:2022-04-25 12:23
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热心网友
时间:2024-06-03 14:57
土壤中的可溶性氮一般指*根,亚*根和铵根离子.
测量步骤应为:
1.取样称量,并溶解于蒸馏水中.
2.加入已知量(需过量)的用稀硫酸酸化过的高锰酸钾溶液.
3.等分并取一份进行氧化还原滴定(注:此还原剂的还原性应不足以被酸化过的*根离子氧化).
4.加入稀硫酸酸化.
5.滴入已知量的(过量)淀粉KI溶液.
6.再用氧化性弱于*的氧化剂对"5"中所得溶液进行氧化还原滴定至蓝色褪去.
记录以上数据并进行简单计算,即可准确测量.
土壤可溶性有机氮是指可以溶于水或盐溶液的有机氮,是土壤氮素中最活跃的组分之一。一方面,它是土壤有效养分的来源之一,可以直接或经过转化后为作物吸收;另一方面,它的移动性较强,可随水分运移而发生径流或淋溶流失,引起环境污染。研究发现,在农田中可溶性有机氮含量为2.9~12.3mg·kg-1,占可溶性总氮(可溶性有机氮和无机氮之和)的13~82%。通过总结前人的研究,Kessel等发现,农田中可溶性有机氮的损失占总溶解性氮素损失的26%。近几年,为探索其影响因素,组成、运移特性等,越来越多的研究围绕可溶性有机氮展开。目前测定可溶性有机氮的方法为差减法(如图1),需要测定可溶性总氮的含量和矿质态氮的含量,两者之差即为可溶性有机氮的含量。该方法步骤繁琐;并且矿质态氮的测定结果直接影响可溶性有机氮的计算结果,尤其是在矿质态氮含量高的土壤中,矿质态氮测定的误差对计算可溶性有机氮的含量影响很大,甚至在有的情况下计算为负值;由于可溶性总氮的测定是采用碱性过硫酸钾氧化法进行的
热心网友
时间:2024-06-03 14:58
最近很多人会问总氮的测定方法到底是什么?应该怎么检测呢?今天我来说说总氮的测定方法吧;从以下3个方面说,看完你就会一亩了然了~
仪器
(1)紫外分光光度计。
(2)压力蒸汽消毒器或家用压力锅。
(3)具塞玻璃磨口比色管。
试剂
(1)无氨水,每升水中加入0.1ml浓硫酸,蒸馏。收集流出液于玻璃容器中。
(2)20%(m/V)氢氧化钠:称取20g氢氧化钠,溶于无氨水中,稀释至100ml。
(3)碱性过硫酸钾溶液:称取40g过硫酸钾,15g氢氧化钠,溶于无氨水中,稀释至1000ml,溶液存放在聚乙烯瓶内,可储存一周。
(4)1+9盐酸。
(5)*钾标准溶液:a、标准贮备液:称取0.7218g经105-110℃烘干4h的*钾溶于无氨水中,移至1000ml容量瓶中定容。此溶液每毫升含100毫克*盐氮。加入2ml三氯甲烷为保护剂,至少可稳定6个月。b、*钾标准使用液:将贮备液用无氨水稀释10倍而得。此溶液每毫升含10毫克*盐氮。
测定步骤
(1)将取回的进水样、出水样摇匀。
(2)取3个25mL的比色管(注意不是大的比色管)。第一支比色管加蒸馏水加至下部刻度线;第二支比色管加1mL进水样,然后用蒸馏水加至下部刻度线;第三支比色管加2mL出水样,然后用蒸馏水加至下部刻度线。
(3)分别向3个比色管加5mL碱式过硫酸钾
(4)将3个比色管放入到塑料烧杯内,然后放到高压锅内加热。进行消解。
(5)加热完毕,拆开纱布,自然冷却。
(6)冷却后,再向3个比色管分别加1mL1+9的盐酸。
(7)向3个比色管分别加蒸馏水至上部刻度线,摇匀。
(8)使用两种波长,用分光光度计测。首先用波长275nm,10mm的石英比色皿(稍旧的),测空白、进水、出水样并记录数;再用波长220nm,10mm的石英比色皿(稍旧的),测空白、进水、出水样并记录数。
(9)计算结果。
热心网友
时间:2024-06-03 14:58
目前测定可溶性有机氮的方法为差减法 (如图1),需要测定可溶性总氮的含量和矿质态氮的含量,两者之差即为可溶性有机氮的含量。 该方法步骤繁琐;并且矿质态氮的测定结果直接影响可溶性有机氮的计算结果,尤其是在矿质态氮含量高的土壤中,矿质态氮测定的误差对计算可溶性有机氮的含量影响很大,甚至在有的情况下计算为负值;由于可溶性总氮的测定是采用碱性过硫酸钾氧化法进行的,溶液中的铵态氮往往在测定过程中发生损失,使可溶性有机氮的测定结果偏低;另外,在采用15N示踪技术进行试验时,不能直接检测15N在可溶性有机氮中的行为。
原理:
与MBC一样,DON(可溶性有机氮〉TDN的测定不能够直接进行,而是由TDN(可溶性总N)减去TIN((可溶性无机氮)而得出结果。TIN又包括NH*-N和 NO。—N。即:
DON = TDN - NH*一N - NO。一N
测定方法如下:
TDN:(过硫酸钾氧化-紫外分光光度法,农化p128,12.3.4);NO。-N:(紫外分光光度法,农化 p129,12.4) ;
热心网友
时间:2024-06-03 14:59
一、材料:各种干燥、过筛(60~80目)的植物样品。
二、仪器设备:消化管; 微量凯氏定氮蒸馏装;三角烧瓶;微量滴定管; 量筒;容量瓶;烧杯;移液管等。
三、植物样品中氮元素含量检测实验:
1、样品提取分离:准确称取烘至恒重的样品0.1000g~0.5000g(依样品含氮量而定,含氮1~3mg宜),置10ml离心管中,加入5ml5%三氯乙酸,90℃水浴中浸提15min,不时搅拌。
取出后用少量蒸馏水冲洗玻棒,待溶液冷却后,4000rpm离心15min,上清液弃去。并用5%三氯乙酸洗沉淀2~3次,离心,弃去上清液,最后用蒸馏水将沉淀无损地洗入铺有滤纸的漏斗上,去掉滤液后,将沉淀和滤纸在50℃下烘干,用于蛋白氮的测定。
2、样品的消化:取4支消化管编号。1号管直接放入称好的材料用于测定总氮,2号管放入上述烘干的滤纸和沉淀,用于蛋白氮的测定,3号管放入同样滤纸一张、4号管不加任何样品作为空白对照,注意将样品放入消化管底部。
向各消化管加浓硫酸5ml,混合催化剂0.3g~0.5g,将样品浸泡数h或放置过夜后,在管口盖一小漏斗,放在远红外消煮炉上加热消化。开始时温度可稍低,以防止内容物上升至管口。泡沫多时,可从小漏斗加入2~3滴无水乙醇。
到管口出现白色雾状物时,泡沫已不再产生;此时可逐渐升温,使内容物达到微沸。直到消化液变为清澈透明为止。
消化过程中,若在消化管上部发现有黑色颗粒时,应小心地转动消化管,用消化液将它冲洗下来,以保证样品消化完全。消化过程约需2~3h。
3、定容消化完毕待溶液冷却后,沿管壁仔细加入10ml左右无氨蒸馏水,以冲洗管壁,再将消化液小