干粉引物稀释的正确方法

1、重溶：在TE中重溶引物，最终浓度为50~100μM。这样可以确保引物充分溶解，达到合适的浓度后续实验。2、离心：收到干粉引物后，在开启离心管盖前先进行离心处理。将管子放入离心机中，3000-4000转/分钟的转速下离心1分钟即可。3、储存：振荡均匀后保存于-20℃条件下，常用的小分子化合物也可分装储存...

ATAGO爱拓成立于1940年，总部位于日本东京，拥有逾80年光学测量仪器的研究开发与生产制造经验，是专业的折光仪生产企业，其主要产品为折光仪及基于折光法原理测量多种物质浓度的衍生浓度计。020-38106065。

先离心！然后加入适量的水或TE溶解。一般配制成较高浓度的母液（约100μM），保存于-20℃。使用前取出其中一部分用ddH2O配制成10μM或20μM的工作液。引物浓度不宜偏高，浓度过高有两个弊端：一是容易形成引物二聚体（primer-dimer），二是当扩增微量靶序列并且起始材料又比较粗时，容易产生非特异性...

◆干粉引物溶解稀释方法：收到引物后，在开启离心管盖前在3000-4000转/分钟的转速下离心1分钟，以防开盖时引物干粉散失。引物保存在高浓度的状况下比较稳定。如果对实验的重复性要求较高，合成的OD数较大，建议分装，避免反复冻融。引物一般配制成10-100pmol/uL(umol/L)。引物管上标有1OD 相当于多少...

引物稀释到10um正确步骤如下：1、首先收到引物后，在开启离心管盖前在3000至4000转每分钟的转速下离心1分钟，以防开盖时引物干粉散失。2、然后在装有引物的eppendorf管内加入500ul双蒸水，盖上管盖，充分上下振荡5-10分钟，再次在10000转每分钟的转速下离心1分钟。3、其次计算原引物的浓度（必要时测...

楼主说的是PCR引物么？一般生产商会提供TE缓冲液，用那个溶解为高浓度母液分装（我们实验室用的母液是100uM），冻存在-30度，使用前再用双蒸水稀释一次到使用浓度，这个使用中溶液也是保存在-30度的，但因为每次用都会化开的缘故，最后在几周内用完，分装时算好用量就好了。

引物合成后干粉状态在室温下可以放半年,溶解后室温下也可以放一周,但是最好是-20度保存.你可以用灭菌水进行稀释,不过用TE进行稀释更有利于引物的保存,浓度看你自己的需要了 ,每个人都有自己的习惯,有的稀释成20uM,有的稀释成10uM,有的稀释成100uM都可以.保存在-20度,稀释可以加DDH2O,加多少合成...

液体引物再稀释可用下列公式：引物需要稀释要达到的浓度(pmol/μl) = 母液浓度(pmol/μl) × 吸取的母液体积(μl) ÷ [ 吸取母液的体积(μl) + 加水量(μl) ]若为干粉引物，则先按照引物管上的加水量，将引物溶解，一般为100pmol/μl(μmol/l)

干粉吧？一般都是1xTE稀释到100uM储存，再用水稀释到10uM用于PCR反应。至于需要加多少溶液去稀释，随引物的合成报告单上会有写。

博凌科为-为你浓度一般是10uM吧.50ul体系一般加引物1uL.合成引物的管上会标注每管引物的mol数,按引物干粉的量加上相应的双蒸水就可以了.

用紫外分光光度计，波长260nm，石英比色杯，光程为1厘米，测定溶液的光密度。测定时溶液的光密度最好稀释到0.2-1.0之间。DNA干粉用一定体积的水充分振荡溶解以后，用1ml水稀释测OD值。需要根据稀释倍数换算出母液的OD值。