5×转膜液怎么稀释

1、加去离子水将溶液与5×转膜液中。2、定容至1L后，室温保存即可。稀释，英文是dilution，指对现有溶液加入更多溶剂而使其浓度减小的过程。

5*SDS-PAGE电泳缓冲液 0.125M tris 15.1g, 1.25M glycine 94g,0.5% SDS 5.0g,加入800ml去离子水，搅拌溶解。加去离子水将溶液定容至1L后，室温保存。用的时候稀释成1*的就可以了。转膜缓冲液的配制方法：39mM glycine 2.9g,48mM tris 5.8g, SDS 0.37g 加入600ml去离子水，充分搅拌溶...

使用时，直接用双蒸水稀释五倍（100ml缓冲液+400ml双蒸水,混匀，常温保存）。一般此电泳液可反复使用三到五次，如果发现有明显沉淀或者漂浮时，请丢弃换新的。10×电转液 (1L)所需试剂 ： Tris，甘氨酸和SDS 配方： 30.3g Tris 144g 甘氨酸 3.7 g SDS (如有必要可加)。用80...

导致蛋白跑出杂带。根据查询百度健康信息显示，转膜液稀释过大会导致蛋白跑出杂带，影响结果，还会使蛋白质难以转移，降低转膜效率，不要自行稀释转膜液。

分子杂交时转膜缓冲液，为0。3mol/L NaCl，0.03mol/L柠檬酸钠.3H2O，PH为7.0，使用时等体积稀释，比如，你要用500ml转膜缓冲液，得去250ml2XSSC。不过，由于使用量比较大，我都配置成20倍。

1、用0.01M PBS洗膜,5min ×3次。 2、加入包被液,平稳摇动,室温2hr。 3、弃包被液,用0.01M PBS洗膜,5min×3次。 4、加入一抗(按合适稀释比例用0.01M PBS稀释,液体必须覆盖膜的全部),4℃ 放置12hr以上。阴性对照,以1%BSA取代一抗,其余步骤与实验组相同。 5、弃一抗和1%BSA,用0.01M PBS分别洗膜,...

使用时稀释10倍 即为1×TBE Buffer。 (1)设计重组引物TF-F,R,进行PCR扩增,PCR产物纯化回收。 (2)使用NEB限制性内切酶将pet28a载体线性化,并进行纯化回收。 (3)利用重组试剂盒进行重组反应(Vazyme, C112-02)。 (4)将反应体系加入DH5α感受态中,进行转化,涂板,挑斑检测。挑选阳性菌液过夜培养,提质粒,-20...

（1） 参考二抗的说明书，按照适当比例用Western二抗稀释液稀释辣根过氧化物酶(HRP)标记的二抗。（2）用微型台式真空泵吸尽洗涤液，立即加入稀释好的二抗，室温或4℃在侧摆摇床上缓慢摇动孵育一小时。（3）回收二抗。加入Western洗涤液，在侧摆摇床上缓慢摇动洗涤5-10分钟。吸尽洗涤液后，再加入洗涤液...

1、用0.01M PBS洗膜，5min ×3次。2、加入包被液，平稳摇动，室温2hr。3、弃包被液，用0.01M PBS洗膜，5min×3次。4、加入一抗（按合适稀释比例用0.01M PBS稀释，液体必须覆盖膜的全部），4℃ 放置12hr以上。阴性对照，以1%BSA取代一抗，其余步骤与实验组相同。5、弃一抗和1%BSA，用0...

3. 跑胶前，需进行蛋白浓度检测，若浓度偏低，可能是蛋白提取不成功。4. 转膜后，使用丽春红染色，若观察到明显的蛋白条带，说明转膜效果良好。5. 显色后，检测内参和目的蛋白的表达情况。6. 若蛋白未完全变性，应提高SDS浓度并延长煮沸时间。7. 若蛋白浓度过高，应加入缓冲液稀释至适宜浓度。8. ...