为什么测定蛋白质的乳化性的时候要以SDS为空白
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发布时间:2022-08-25 21:22
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热心网友
时间:2024-10-30 01:57
为什么测定蛋白质的乳化性的时候要以SDS为空白
注意事项
(1)由于与凝胶聚合有关的硅橡胶称、玻璃板表面不光滑洁净,在电泳时会造成凝胶板与玻璃板或硅橡胶条剥离,产生气泡或滑胶;剥胶时凝胶板易断裂,为防止引现象,所用器材均应严格地清洗。硅橡胶条的凹槽、样品槽模板及电泳槽用泡沫海绵蘸取“洗洁净”仔细清洗。玻璃板浸泡在重铬酸钾洗液3~4h或0.2mol/L KOH的酒精溶液中20min以上,用清水洗净,再用泡沫海绵蘸取“洗洁净”反复刷洗,最后用蒸馏水冲洗,直接阴干或用乙醇冲洗后阴干。
(2)安装电泳槽和镶有长、短玻璃板的硅橡胶框时,位置要端正,均匀用力旋紧固定螺丝,以免缓冲液渗漏。样品槽板梳齿应平整光滑。
(3)在不连续电泳体系中,预电泳只能在分离胶乡合后进行。洗净胶面后才能制备浓缩胶。浓缩胶制备后,不能进行预电泳,以充分利用浓缩胶的浓缩效应。
(4)电泳时,电泳仪与电泳槽间正、负极不能接错,以免样品反方向泳动,电泳时应选用合适的电流、电压,过高或过低无可影响电泳效果。
(5)SDS纯度:在SDS-PAGE中,需高纯度的SDS,市售化学纯SDS需重结晶一次或两次方可使用。重结晶方法如下:称20g SDS放在圆底烧瓶中,加300ml无水乙醇及约半牛角匙活性碳,在烧瓶上接一冷凝管,在水浴中加热至乙醇微沸,回流约10min,用热布氏漏斗趁热过滤。滤液应透明,冷却至室温后,移至-20℃冰箱中过夜。次日用预冷的布氏漏斗抽滤,再用少量-20℃预冷的无水乙醇洗涤白色沉淀3次,尽量抽干,将白色结晶置真空干燥器中干燥或置40℃以下的烘箱中烘干。
(6)用SDS处理蛋白质样品时,每次都会在沸水溶中保温3~5min,以免有亚稳聚合物存在。
(7)标准蛋白质的相对迁移率最好在0.2~0.8之间均匀分布。值得指出的是,每次测定未知物分子量时,都应同时用标准蛋白制备标准曲线,而不是利用过去的标准曲线。用此法测定的分子量只是它们的亚基或单条肽链的分子量,而不是完整的分子量。为测得精确的分子量范围,最好用其他测定蛋白分子量的方法加以校正。此法对球蛋白及纤维状蛋白的分子量测定较好,对糖蛋白,胶原蛋白等分子量测定差异较大。
(8)对样品的要求:应采纳低离子强度的样品。如样品中离子强度高,则应透析或经离子交换除盐。加样时,应保持凹形加样槽胶面平直。加样量以10~15μl为宜,如样品系较稀的液体状,为保证区带清晰,加样量可增加,同时应将样品溶解液浓度提高二倍或更高。
(9)由于凝胶中含SDS,直接制备干板会产生龟裂现象。如需制干板,则用25%异丙醇内含7%乙酸浸泡,并经常换液,直到SDS脱尽(约需2~3天),才可制备干板。为方便起见,常采用照像法,保存照片。
热心网友
时间:2024-10-30 01:58
理论上应该是初期是形成水包油,随着油的比例的增大,会形成油包水体系。不过大豆蛋白的乳化性应该不高吧,我怀疑可能形成不了油包水体系,乳化到一定程度就无法再乳化更多的油了吧,你可以再查查相关资料。
评价一种乳化剂易形成油包水还是水包油型体系常用hlb值法。
hlb值(hydrophile-lipophile
balance
number)称亲水疏水平衡值,也称水油度。它既与表面活性剂的亲水亲油性有关,又与表面活性剂的表面(界面)张力、界面上的吸附性、乳化性及乳状液稳定性、分散性、溶解性、去污性等基本性能有关,还与表面活性剂的应用性能有关。
亲水亲油平衡值(
hlb
值)是用来表示表面活性剂亲水或亲油能力大小的值。
1949
年
griffin
提出了
hlb
值的概念。将非离子表面活性剂的
hlb
值的范围定为
0
~
20
,将疏水性最大的完全由饱和烷烃基组成的石蜡的
hlb
值定为
0
,将亲水性最大的完全由亲水性的氧乙烯基组成的聚氧乙烯的
hlb
值定为
20
,其他的表面活性剂的
hlb
值则介于
0
~
20
之间。
hlb
值越大,其亲水性越强,
hlb
值越小,其亲油性越强。随着新型表面活性剂的不断问世,已有亲水性更强的品种应用于实际,如月桂醇硫酸钠的
hlb
值为
40
。
1~3作消泡剂;
3~6作w/o型[油包水]型乳化剂;
7~9作润湿剂;
8~18作o/w[水包油]型乳化剂;
13~18作增溶剂。